Preview

Трансплантология

Расширенный поиск

Увеличит ли аппаратная перфузия печени количество донорских органов, пригодных для трансплантации?

https://doi.org/10.23873/2074-0506-2018-10-4-308-326

Полный текст:

Аннотация

Во всем мире наблюдается тенденция к росту числа пациентов, ожидающих трансплантацию печени, несмотря на увеличение общего количества операций по трансплантации печени. Решение проблемы дефицита донорских органов возможно за счет использования органов от маргинальных доноров, а именно органов, изъятых после остановки сердца, органов с большим процентом жирового гепатоза, а также органов от доноров в возрасте старше 60 лет. Основная причина отказа от их применения – риск развития тяжелых осложнений и неблагоприятного исхода операции. Статическая холодовая консервация на сегодняшний день – основной метод защиты донорских органов от тепловых повреждений, обладающий достаточно эффективными протективными свойствами. В то же время продолжительность холодовой консервации имеет ограниченный временной интервал. Всегда существует неопределенность относительно жизнеспособности органа. Современные методы оценки донорских органов – анамнез донора, лабораторные данные, визуальный осмотр и морфология – не позволяют достоверно прогнозировать функцию печени после трансплантации. В связи с этим разработка методов консервации органа после изъятия, которые не ухудшают качество органа или даже способны восстановить утраченные функции, является актуальной. Аппаратная перфузия печени представляет собой одну из новых концепций, направленных на решение данной проблемы. В статье освещен международный опыт применения аппаратной перфузии донорской печени за последние 15 лет. Аппаратная перфузия представляет собой перспективное направление развития трансплантологии, позволяющее сократить дефицит донорских органов и улучшить их качество.

Об авторах

В. А. Гуляев
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Владимир Алексеевич Гуляев – доктор медицинских наук, ведущий научный сотрудник отделения трансплантации почки и поджелудочной железы 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



С. В. Журавель
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Сергей Владимирович Журавель– доктор медицинских наук, заведующий научным отделением анестезиологии и реанимации для трансплантации органов 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



М. С. Новрузбеков
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Мурад Сафтарович Новрузбеков – кандидат медицинских наук, заведующий научным отделением трансплантации печени 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



О. Д. Олисов
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Олег Даниелович Олисов – кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник отделения трансплантации печени 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



К. Н. Луцык
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Константин Николаевич Луцык – кандидат медицинских наук, заведующий операционным блоком Городского центра трансплантации печени 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



М. Г. Минина
МКЦОД ГБУЗ «ГКБ им. С.П. Боткина ДЗМ»,
Россия

Марина Геннадьевна Минина – доктор медицинских наук, заведующая Московским координационным центром органного донорства 

125284, Москва, 2-й Боткинский пр-д, д. 5



А. С. Миронов
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Александр Сергеевич Миронов –кандидат медицинских наук, старший научный сотрудник отделения анестезиологии и реанимации для трансплантации органов 

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



Н. К. Кузнецова
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Наталья Константиновна Кузнецова – врач-хирург операционного блока Городского центра трансплантации печени

129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



К. М. Магомедов
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Кубай Магомедович Магомедов – врач-хирург операционного блока Городского центра трансплантации печени 

 129090, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



М. Ш. Хубутия
ГБУЗ «НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ»
Россия

Могели Шалвович Хубутия – академик РАН, профессор, доктор медицинских наук, президент НИИ скорой помощи им. Н.В. Склифосовского ДЗМ 

129090, Россия, Москва, Большая Сухаревская площадь, д. 3



Список литературы

1. Starzl T.E., Marchioro T.L., Vonkaulla K.N., et al. Homotransplantation of the liver in humans. Surg. Gynecol. Obstet. 1963;117:659–676. PMID:14100514

2. Wertheim J.A., Petrowsky H., Saab S., et al. Major challenges limiting liver transplantation in the United States. Am. J. Transplant. 2011;11(9):1773–1784. DOI:10.1111/j.1600-6143.2011.03587.x

3. Seal J.B., Bohorquez H., Reichman T., et al. Thrombolytic protocol minimizes ischemic-type biliary complications in liver transplantation from donation after circulatory death donors. Liver Transpl. 2015;21(3):321–328. DOI:10.1002/lt.24071

4. Kim W.R., Lake J.R., Smith J.M., et al. Liver. Am. J. Transplant. 2016;16(Suppl 2):69–98. DOI.org/10.1111/ajt.13668

5. Goldaracena N., Barbas A.S., Selzner M. Normothermic and subnormothermic ex-vivo liver perfusion in liver transplantation. Curr. Opin. Organ. Transplant. 2016;21(3):315–321. DOI:10.1097/MOT.0000000000000305

6. Singhal A., Wima K., Hoehn R.S., et al. Hospital resource use with donation after cardiac death allografts in liver transplantation: a matched controlled analysis from 2007 to 2011. J. Am. Coll. Surg. 2015;220(5):951–958. DOI:10.1016/j.jam-collsurg.2015.01.052

7. Deshpande R., Heaton N. Can nonheart-beating donors replace cadaveric heart-beating liver donors. J. Hepatol. 2006;45(4):499–503. DOI:10.1016/j.jhep.2006.07.018

8. de Vera M.E., Lopez-Solis R., Dvorchik I., et al. Liver transplantation using donation after cardiac death donors: Longterm follow-up from a single center. Am. J. Transplant. 2009; 9(4):773–781. DOI:10.1111/j.1600-6143.2009.02560.x

9. Abt P.L., Desai N.M., Crawford M.D., et al. Survival following liver transplantation from non-heart-beating donors. Ann. Surg. 2004;239(1):87–92. DOI: 10.1097/01.sla.0000103063.82181.2c

10. Dutkowski P., Schlegel A., Slankamenac K., et al. The use of fatty liver grafts in modern allocation systems: risk assessment by the balance of risk (BAR) score. Ann. Surg. 2012;256(5):861–868. DOI: 10.1097/SLA.0b013e318272dea2

11. Nemes B., Gámán G., Polak W.G. et al. Extended-criteria donors in liver transplantation Part II: reviewing the impact of extended-criteria donors on the complications and outcomes of liver transplantation. Expert. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2016; 10(7): 841–859. DOI: 10.1 586/17474124.2016.1149062

12. Drobnis E.Z., Crowe L.M., Berger T., et al. Cold shock damage is due to lipid phase transitions in cell membranes: a demonstration using sperm as a model. J. Exp. Zool. 1993;265(4):432–437. DOI:10.1002/jez.1402650413

13. Chernyak B.V., Izyumov D.S., Lyamzaev K.G., et al. Production of reactive oxygen species in mitochondria of HeLa cells under oxidative stress. Biochim. Biophys. Acta. 2006;1757(5–6):525– 534. DOI:10.1016/j.bbabio.2006.02.019

14. van Golen R.F., van Gulik T.M., Heger M. Mechanistic overview of reactive species-induced degradation of the endothelial glycocalyx during hepatic ischemia/ reperfusion injury. Free Radic. Biol. Med. 2012;52(8):1382–1402. DOI:10.1016/j.freeradbiomed.2012.01.013

15. Zhai Y., Petrowsky H., Hong J.C., et al. Ischaemia-reperfusion injury in liver transplantation-from bench to bedside. Nat. Rev. Gastroenterol. Hepatol. 2013;10(2):79–89. DOI:10.1038/nrgastro.2012.225

16. Loor G., Kondapalli J., Iwase H., et al. Mitochondrial oxidant stress triggers cell death in simulated ischemiareperfusion. Biochim. Biophys. Acta. 2011;1813(7):1382–1394. DOI:10.1016/j.bbamcr.2010.12.008

17. Schlegel A., Graf R., Clavien P.A., Dutkowski P. Hypothermic oxygenated perfusion (HOPE) protects from biliary injury in a rodent model of DCD liver transplantation. J. Hepatol. 2013;59(5):984–991. DOI:10.1016/j. jhep.2013.06.022

18. Furukawa H., Todo S., Imventarza O., et al. Effect of cold ischemia time on the early outcome of human hepatic allografts preserved with UW solution. Transplantation. 1991;51(5):1000–1004. PMID:2031256

19. Vilca Melendez H., Rela M., Murphy G., Heaton N. Assessment of graft function before liver transplantation: quest for the lost ark? Transplantation. 2000;70(4):560–565. PMID:10972207

20. Carrel A., Lindbergh C.A. The culture of whole organs. Science. 1935;81:621– 623. DOI:10.1126/science.81.2112.621

21. Marchioro T.L., Huntley R.T., Waddell W.R., Starzl T.E. Extracorporeal perfusion for obtaining postmortem homografts. Surgery. 1963;54:900–911. PMID:14087127

22. Kestens P.J., Mikaeloff P., Haxhe J.J., et al. Homotransplantation of the canine liver after hypothermic perfusion of long duration. Bull. Soc. Int. Chir. 1966;25(6):647–659. PMID:4861669

23. Slapak M., Wigmore R.A., MacLean L.D. Twenty-four hour liver preservation by the use of continuous pulsatile perfusion and hyperbaric oxygen. Transplantation. 1967;5(4, Suppl.):1154–1158. PMID:4860607

24. Brettschneider L., Groth C.G., Starzl T.E. Experimental and clinical preservation of orthotopic liver homografts. In: Norman J. (ed.) Organ perfusion and preservation. New York: Appleton-Century Crofts, 1968: 271–284.

25. Menasche P., Termignon J.L., Pradier F., et al. Experimental evaluation of Celsior, a new heart preservation solution. Eur. J. Cardiothorac. Surg. 1994;8(4):207– 2013. PMID:8031565

26. Stone J.P., Sevenoaks H., Sjoberg T., et al. Mechanical removal of dendritic cell-generating non-classical monocytes via ex vivo lung perfusion. J. Heart. Lung. Transplant. 2014;33(8):864–869. DOI:10.1016/j.healun.2014.03.005

27. Karangwa S. A., Dutkowski P., Fontes P., et al. Machine Perfusion of Donor Livers for Transplantation: A Proposal for Standardized Nomenclature and Reporting Guidelines. Am. J. Transplant. 2016;16(10):2932–2942. DOI:10.1111/ajt.13843

28. Belzer F.O., Glass N.R., Sollinger H.W., et al. A new perfusate for kidney preservation. Transplantation. 1982;33(3):322– 323. PMID:7039039

29. Lee M.P., Gear A.R. The effect of temperature on mitochondrial membrane-linked reactions. J. Biol. Chem. 1974;249(23):7541–7549. PMID:4279918

30. Reeb J., Keshavjee S., Cypel M. Expanding the lung donor pool: advancements and emerging pathways. Curr. Opin. Organ. Transplant. 2015;20(5):498–505. DOI:10.1097/MOT.0000000000000233

31. St. Peter S.D., Imber C.J., Friend P.J. Liver and kidney preservation by perfusion. Lancet. 2002;359:604–613. DOI:10.1016/S0140-6736(02)07749-8

32. Chatauret N., Coudroy R., Delpech P.O., et al. Mechanistic analysis of nonoxygenated hypothermic machine perfusion's protection on warm ischemic kidney uncovers greater eNOS phosphorylation and vasodilation. Am. J. Transplant. 2014;14(11):2500–2514. DOI:10.1111/ajt.12904

33. van der Plaats A., 't Hart N.A., Verkerke G.J., et al. Hypothermic machine perfusion in liver transplantation revisited: Concepts and criteria in the new millenium. Ann. Biomed. Eng. 2004;32(4):623–631. PMID:15117035

34. Dutkowski P., Schlegel A., de Oliveira M., et al. HOPE for human liver grafts obtained from donors after cardiac death. J. Hepatol. 2014; 60(4):765–772. DOI:10.1016/j.jhep.2013.11.023

35. Changani K.K., Fuller B.J., Bryant D.J., et al. Non-invasive assessment of ATP regeneration potential of the preserved donor liver. A 31P MRS study in pig liver. J. Hepatol. 1997;26(2):336–342. PMID:9059955

36. Jomaa A., Gurusamy K., Siriwardana P.N., et al. Does hypothermic machine perfusion of human donor livers affect risks of sinusoidal endothelial injury and microbial infection? A feasibility study assessing flow parameters, sterility, and sinusoidal endothelial ultrastructure. Transplant. Proc. 2013;45(5):1677–1683. DOI:10.1016/j.transproceed.2013.01.011

37. Hart N.A., der van Plaats A., Leuvenink H.G., et al. Determination of an adequate perfusion pressure for continuous dual vessel hypothermic machine perfusion of the rat liver. Transpl. Int. 2007;20(4):343–352. DOI:10.1111/j.1432-2277.2006.00433.x

38. Fondevila C., Hessheimer A.J., Maathuis M.H., et al. Hypothermic oxygenated machine perfusion in porcine donation after circulatory determination of death liver transplant. Transplantation. 2012;94(1):22–29. DOI:10.1097/TP.0b013e31825774d7

39. Minor T., Manekeller S., Sioutis M., Dombrowski F. Endoplasmic and vascular surface activation during organ preservation: Refining upon the benefits of machine perfusion. Am. J. Transplant. 2006;6(6):1355–1366. DOI:10.1111/j.1600-6143.2006.01338.x

40. Pienaar B.H., Lindell S.L., van Gulik T., et al. Seventy-two-hour preservation of the canine liver by machine perfusion. Transplantation. 1990;49(2):258–260. PMID:2305453

41. Guarrera J.V., Henry S.D., Samstein B., et al. Hypothermic machine preservation in human liver transplantation: the first clinical series. Am. J. Transplant. 2010;10(2):372–381. DOI:10.1111/j.1600-6143.2009.02932.x

42. Schlegel A., Dutkowski P. Role of hypothermic machine perfusion in liver transplantation. Transpl. Int. 2015;28(6):677–689. DOI:10.1111/tri.12354

43. Tang D., Kang R., Zeh H.J. 3rd, Lotze M.T. High-mobility group box 1, oxidative stress, and disease. Antioxid. Redox. Signal. 2011;14(7):1315–1335. DOI:10.1089/ars.2010.3356

44. Schlegel A., de Rougemont O., Graf R., et al. Protective mechanisms of endischemic cold machine perfusion in DCD liver grafts. J. Hepatol. 2013;58(2):278– 286. DOI:10.1016/j.jhep.2012.10.004

45. Howard T.K., Klintmalm G.B., Cofer J.B., et al. The influence of preservation injury on rejection in the hepatic transplant recipient. Transplantation. 1990;49(1):103–107. PMID:2300999

46. Liu Q., Nassar A., Farias K., et al. Sanguineous normothermic machine perfusion improves hemodynamics and biliary epithelial regeneration in donation after cardiac death porcine livers. Liver Transpl. 2014;20(8);987–999. DOI:10.1002/lt.23906

47. Dutkowski P., Schönfeld S., Heinrich T., et al. Reduced oxidative stress during acellular reperfusion of the rat liver after hypothermic oscillating perfusion. Transplantation. 1999;68(1):44–50. PMID:10428265

48. Dutkowski P., Graf R., Clavien P.A. Rescue of the cold preserved rat liver by hypothermic oxygenated machine perfusion. Am. J. Transplant. 2006;6(5 Pt1):903–912. DOI:10.1111/j.16006143.2006.01264.x

49. Bruinsma B.G., Berendsen T.A., Izamis M., et al. Determination and extension of the limits to static cold storage using subnormothermic machine perfusion. Int. J. Artif. Organs. 2013;36(11):775–780. DOI:10.5301/ijao.5000250

50. Guarrera J.V., Henry S.D., Samstein B., et al. Hypothermic machine preservation facilitates successful transplantation of “orphan” extended criteria donor livers. Am. J. Transplant. 2015;15(1):161– 169. DOI:10.1111/ajt.12958

51. Upadhya G.A., Topp S.A., Hotchkiss R.S., et al. Effect of cold preservation on intracellular calcium concentration and calpain activity in rat sinusoidal endothelial cells. Hepatology. 2003;37(2):313–323. DOI:10.1053/jhep.2003.50069

52. Schlegel A., Kron P., Dutkowski P. Hypothermic oxygenated liver perfusion: basic mechanisms and clinical application. Curr. Transplant. Rep. 2015;2(1):52– 62.

53. Dutkowski P., Polak W.G., Muiesan P., et al. First comparison of hypothermic oxygenated perfusion versus static cold storage of human donation after cardiac death liver transplants: an international-matched case analysis. Ann. Surg. 2015;262(5):764–770. DOI:10.1097/SLA.0000000000001473

54. Sutton M.E., Op den Dries S., Karimian N., et al. Criteria for viability assessment of discarded human donor livers during ex vivo normothermic machine perfusion. PLoS ONE. 2014;9(11):e110642. DOI:10.1371/journal.pone.0110642

55. Minor T., Efferz P., Fox M., et al. Controlled oxygenated rewarming of cold stored liver grafts by thermally graduated machine perfusion prior to reperfusion. Am. J. Transplant. 2013;13(6):1450– 1460. DOI:10.1111/ajt.12235

56. Bruinsma B.C., Yeh H., Ozer S., et al. Subnormothermic Machine Perfusion for Ex Vivo Preservation and Recovery of the Human Liver for Transplantation. Am. J. Transpl. 2014;14(6):1400–1409. DOI:10.1111/ajt.12727

57. Lüer B., Koetting M., Efferz P., Minor T. Role of oxygen during hypothermic machine perfusion preservation of the liver. Transpl. Int. 2010;23(9):944–950. DOI:10.1111/j.1432-2277.2010.01067.x

58. Manekeller S., Schuppius A., Stegemann J., et al. Role of perfusion medium, oxygen and rheology for endoplasmic reticulum stress-induced cell death after hypothermic machine preservation of the liver. Transpl. Int. 2008;21(2):169–177. DOI:10.1111/j.1432-2277.2007.00595.x

59. Perk S., Izamis M.L., Tolboom H., et al. A metabolic index of ischemic injury for perfusion-recovery of cadaveric rat livers. PLoS ONE. 2011;6(12):e28518. DOI:10.1371/journal.pone.0028518

60. Hohenester S., Wenniger L.M., Paulusma C.C., et al. A biliary HCO3– umbrella constitutes a protective mechanism against bile acid-induced injury in human cholangiocytes. Hepatology. 2012;55(1):173–183. DOI:10.1002/hep.24691

61. Berendsen T.A., Bruinsma B.G., Lee J., et al. A simplified subnormothermic machine perfusion system restores ischemically damaged liver grafts in a rat model of orthotopic liver transplantation. Transplant. Res. 2012;1(1):6. DOI:10.1186/2047-1440-1-6

62. Perk S., Izamis M.L., Tolboom H., et al. A fitness index for transplantation of machine-perfused cadaveric rat livers. BMC Res. Notes. 2012;5:325.

63. Schlegel A., Kron P., Graf R., et al. Hypothermic Oxygenated Perfusion (HOPE) downregulates the immune response in a rat model of liver transplantation. Ann. Surg. 2014;260(5):931– 937. DOI:10.1097/SLA.0000000000000941

64. Spetzler V.N., Goldaracena N., Echiverri J., et al. Subnormothermic ex vivo liver perfusion is a safe alternative to cold static storage for preserving standard criteria grafts. Liver Transpl. 2016;22(1):111–119. DOI:10.1002/lt.24340

65. Op den Dries S., Karimian N., Sutton M.E., et al. Ex vivo normothermic machine perfusion and viability testing of discarded human donor livers. Am. J. Transplant. 2013;13(5):1327–1335. DOI:10.1111/ajt.12187

66. Fondevila C., Hessheimer A.J, Ruiz A., et al. Liver transplant using donors after unexpected cardia death: novel preservation protocol and acceptance criteria. Am. J. Transplant. 2007;7(7):1849–1855. DOI:10.1111/j.1600-6143.2007.01846.x

67. Хубутия М.Ш., Гуляев В.А., Хватов В.Б. и др. Иммунологическая толерантность при трансплантации органов. Трансплантология. 2017;9(3):211–225. DOI:10.23873/2074-0506-2017-9-3-211225

68. Watson C.J., Kosmoliaptsis V., Randle L.V., et al. Preimplantnormothermic liver perfusion of a suboptimal liver donated after circulatory death. Am. J. Transplant. 2016;16(1):353–357. DOI:10.1111/ajt.13448

69. Perera T., Mergental H., Stephenson B., et al. First human liver transplantation using a marginal allograft resuscitated by normothermic machine perfusion. Liver Transpl. 2016;22(1):120–124. DOI:10.1002/lt.24369

70. Nagrath D., Xu H., Tanimura Y., et al. Metabolic preconditioning of donor organs: defatting fatty livers by normothermic perfusion ex vivo. Metab. Eng. 2009; 11(4–5):274–283. DOI:10.1016/j.ymben.2009.05.005

71. Jamieson R.W., Zilvetti M., Roy D., et al. Hepatic steatosis and normothermic perfusion-preliminary experiments in a porcine model. Transplantation. 2011;92(3):289–295. DOI:10.1097/TP.0b013e318223d817

72. Nakajima D., Cypel M., Bonato R., et al. Ex vivo perfusion treatment of infection in human donor lungs. Am. J. Transplant. 2016;16(4):1229–1237. DOI:10.1111/ajt.13562

73. Brockmann J., Reddy S., Coussios C., et al. Normothermic perfusion: A new paradigm for organ preservation. Ann. Surg. 2009;250(1):1–6. DOI:10.1097/SLA.0b013e3181a63c10

74. St. Peter S.D., Imber C.J., Kay J., et al. Hepatic control of perfusate homeostasis during normothermicextrocorporeal preservation. Transplant. Proc. 2003;35(4):1587–1590. PMID:12826227

75. Ravikumar R., Leuvenink H., Friend P.J. Normothermic liver preservation: a new paradigm? Transpl. Int. 2015;28(6):690–699. DOI:10.1111/tri.12576

76. Laing R.W., Mergental H., Mirza D.F. Normothermic ex-situ liver preservation: the new gold standard. Curr. Opin. Organ. Transplant. 2017;22(3):274–280. DOI:10.1097/MOT.0000000000000414

77. Shapey I.M., Muiesan P. Regional perfusion by extracorporeal membrane oxygenation of abdominal organs from donors after circulatory death: A systematic review. Liver Transpl. 2013;19(12):1292–1303. DOI:10.1002/lt.23771

78. Sanchez-Fructuoso A.I., Marques M., Prats D., et al. Victims of cardiac arrest occurring outside the hospital: A source of transplantable kidneys. Ann. Intern. Med. 2006;145(3):157–164. PMID:16880457

79. Минина М.Г., Хубутия М.Ш., Губарев К.К. и др. Практическое использование экстракорпоральной мембранной оксигенации в донорстве органов при трансплантации. Вестник трансплантации и искусственных органов. 2012;14(1):27–35. DOI:10.15825/1995-1191-2012-1-27-35

80. He X., Ji F., Zhiheng Zh., et al. Combined liver-kidney perfusion enhances protective effects of normothermic perfusion on liver grafts from donation after cardiac death. Liver Transpl. 2018;24(1):67–79. DOI:10.1002/lt.24954

81. Banan B., Watson R., Xu M. Development of a normothermic extracorporeal liver perfusion system toward improving viability and function of human extended criteria donor livers. Liver Transpl. 2016;22(7):979–993. DOI:10.1002/lt.24451

82. Op den Dries S. Bile duct injury in liver transplantation: studies on etiology and the protective role of machine perfusion: dissertation. Groningen, the Netherlands: University of Groningen; 2013. 253p.

83. Trakarnsanga K., Griffiths R.E., Wilson M.C., et al. An immortalized adult human erythroid line facilitates sustainable and scalable generation of functional red cells. Nat Commun. 2017;8(7):14750. DOI:10.1038/ncomms14750

84. Гуляев В.А. Повышение эффективности трансплантации печени путём совершенствования технологии изъятия и подготовки трансплантата. Дис. … д-ра мед. наук. М., 2016. 299 с.

85. Sakota D., Sakamoto R., Sobajima H., et al. Mechanical damage of red blood cells by rotary blood pumps: selective destruction of aged red blood cells and subhemolytic trauma. Artif. Organs. 2008;32(10):785–791. DOI:10.1111/j.1525-1594.2008.00631.x

86. Fontes P., Lopez R., van der Plaats A., et al. Liver preservation with machine perfusion and a newly developed cell free oxygen carrier solution under subnormothermic conditions. Am. J. Transplant. 2015;15(2):381–394. DOI:10.1111/ajt.12991

87. Rauen U., Petrat F., Li T., De Groot H.H. Hypothermia injury/cold induced apoptosis–evidence of an increase in chelatable iron causing oxidative injury in spite of low O –/ H O formation. FASEB J. 2000;14(13):1953–1964. DOI:10.1096/fj.00-0071com

88. Selzner M., Goldaracena N., Echeverri J., et al. Normothermic ex vivo liver perfusion using Steen solution as perfusate for human liver transplantation-first North American results. Liver Transpl. 2016;22(11):1501–1508. DOI:10.1002/ lt.24499

89. Niemann C.U., Feiner J., Swain S., et al. Therapeutic Hypothermia in Deceased Organ Donors and Kidney-Graft Function. N. Engl. J. Med. 2015;373(27):405– 414. DOI:10.1056/NEJMc1511744

90. Barbas A.S., Knechtle S.J. Expanding the Donor Pool With NormothermicEx Vivo Liver Perfusion: The Future Is Now Am. J. Transplant. 2016;16(11):3075– 3076. DOI:10.1111/ajt.13959

91. Ravikumar R., Jassem W., Mergental H., et al. Liver transplantation after ex vivo normothermic machine preservation: a phase 1 (first-in-man) clinical trial. Am. J. Transplant. 2016;16(6):1779– 1787. DOI:10.1111/ajt.13708

92. Graham J.A., Guarrera J.V. “Resuscitation” of marginal liver allografts for transplantation with machine perfusion technology. J. Hepatol. 2014;61(2):418– 431. DOI:10.1016/j.jhep.2014.04.019

93. Mergental H., Perera T., Laing R.W., et al. Transplantation of Declined Liver Allografts Following Normothermic Ex-Situ Evaluation. Am. J. Transplant. 2016;16(11):3235–3245. DOI:10.1111/ajt.13875

94. Quillin R.C., Guarrera J.V. “In 10 years” of debate: Pro–machine perfusion for liver preservation will be universal. Liver Transpl. 2016;22(Suppl 1):S25–S28. DOI:10.1002/lt.24630


Для цитирования:


Гуляев В.А., Журавель С.В., Новрузбеков М.С., Олисов О.Д., Луцык К.Н., Минина М.Г., Миронов А.С., Кузнецова Н.К., Магомедов К.М., Хубутия М.Ш. Увеличит ли аппаратная перфузия печени количество донорских органов, пригодных для трансплантации? Трансплантология. 2018;10(4):308-326. https://doi.org/10.23873/2074-0506-2018-10-4-308-326

For citation:


Gulyaev V.A., Zhuravel’ S.V., Novruzbekov M.S., Olisov O.D., Lutsyk K.n., Minina M.G., Mironov A.S., Kuznetsova N.K., Magomedov K.M., Khubutiya M.S. Will the machine perfusion of the liver increase the number of donor organs suitable for transplantation? Transplantologiya. The Russian Journal of Transplantation. 2018;10(4):308-326. (In Russ.) https://doi.org/10.23873/2074-0506-2018-10-4-308-326

Просмотров: 218


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2074-0506 (Print)
ISSN 2542-0909 (Online)